Українська English

ISSN 2522-9028 (Print)
ISSN 2522-9036 (Online)
DOI: https://doi.org/10.15407/fz

Fiziologichnyi Zhurnal

is a scientific journal issued by the

Bogomoletz Institute of Physiology
National Academy of Sciences of Ukraine

Editor-in-chief: V.F. Sagach

The journal was founded in 1955 as
1955 – 1977 "Fiziolohichnyi zhurnal" (ISSN 0015 – 3311)
1978 – 1993 "Fiziologicheskii zhurnal" (ISSN 0201 – 8489)
1994 – 2016 "Fiziolohichnyi zhurnal" (ISSN 0201 – 8489)
2017 – "Fiziolohichnyi zhurnal" (ISSN 2522-9028)

Fiziol. Zh. 2007; 53(3): 70-77


Functional-metabolic basis of nitricoxide derivates modulatory influ-ence in brain underthe condition of hemic hypoxia

M.R.Gzhegotsky, L.V.Panina, O.I.Terletska,S.M.Kovalchuk.

    Lviv National Medical University named after DanyloHalytsky, Ukraine



Abstract

Free radical homeostasis parameters of rat’s brain mitochon- dria under conditions of sodium nitrite administration at the peak of hypoxia had been studied. Prior to study experimental animals have been divided into two groups depending on resistance to hypobaric hypoxia. In brain mitochondria of high-resistant to hypoxia rats increase of the nitrites-ions contents and also in- tensification of pro- and antioxidative processes were registered in comparison with the control group. Decrease of all investgated free radical homeostasis parameters in brain mitochondria of low-resistant to hypoxia animals in comparison with the control group was determined. Administration of pro-hypoxic factor in toxic dose allowed us to reveal specific peculiarities of redox processes development in the brain mitochondria of experimen- tal animals with different resistance to hypoxia.

References

  1. Березовский В.А. Бойко К.А., Клименко К.С. и др. Гипоксия и индивидуальные особенности реактив-ности. – К.: Наук. думка, 1978. – 214 с.
  2. Гадзиева И.Н. Методические рекомендации по дифференциальной диагностике различных форм ишемической болезни сердца с использованием определения компонентов глутатионовой противо- перекисной каталитической системы в эритроцитах крови. – Одесса: Изд-во МЗ СССР, 1982. – 25 с.
  3. Гжегоцький М.Р., Ковальчук С.М., Паніна Л.В. та ін. Метод визначення пероксидної резистентності еритроцитів та його інформативність за фізіологічних умов та при інтоксикації організму // Експерим. та клін. фізіологія та біохімія. – 2004. – № 3. – С. 58–64.
  4. Давыдов В.В. Особенности обмена свободной малоновой кислоты в тканях крыс // Укр. биохим. журн. – 1991. – 63, № 1. – С. 56–60.
  5. Давыдов В.В. Пути образования эндогенного мало- ната в печени крыс // Там же. – 1993. – 65, № 2. –С. 85–88.
  6. Зозуля Ю.А., Сенько Л.Н. Мультифункциональ- ность и метаболизм оксида азота в центральной нерв- ной системе // Теор. медицина. – 2000. – 6, №1. –С. 3–25.
  7. Ковальчук С.Н., Тимочко М.Ф. Особенности метабо- лической регуляции компенсаторных систем с различным уровнем резистентности. – В кн.: Материа- лы Междунар. конф. посвящ. 75-летию со дня рож-дения А.М.Уголева “Механизмы функционирования висцеральных систем”. – Спб., 2001. – С. 359–360.
  8. Королюк М.А. Метод определения активности каталазы // Лаб. дело. – 1988. – № 1. – С. 16–19.
  9. 9. Костюк В.А., Потапович А.И., Ковалева Ж.В. Простой и чувствительный метод определения активности супероксиддисмутазы, основанный на реакции окисления кверцетина // Вопросы мед.химии. – 1990. – № 2. – С. 88–91.
  10. 10.Лебкова Н.П. Современные представления о внутриклеточных механизмах обеспечения энерге- тического гомеостаза в норме и при патологии //Вестн. РАН. – 2000. – № 9. – С. 16–22.
  11. Мартынюк В.Б., Ковальчук С.М., Тимочко М.Ф. и др. Индекс антиокислительной активности биологи-ческого материала // Лаб. дело. – 1991. – № 3. –С. 19–22.
  12. Моин В.М. Простой и специфический метод определения активности глутатионпероксидазы в эритроцитах // Там же. – 1986. – № 6. – С. 724–727.
  13. Паніна Л.В., Тимочко М.Ф., Терлецька О.І. та ін. Роль оксиду азоту в розвитку антигіпоксичної адаптації // Експерим. та клін. фізіологія та біохімія. –1999. – № 4. – С.29–39.
  14. Паніна Л.В., Гжегоцький М.Р., Ковальчук С.М. Особливості метаболічних змін у мітохондріях печінки при гемічній гіпоксії. – У кн.: Матеріали міжнар. конф. „Клітинні і субклітинні механізми функціонування травної системи”, приуроченої до 80-ліття з дня народження проф. І.В.Шостаковської,2004 р. – Львів, 2004. – С. 59.
  15. Паніна Л.В., Терлецька О.І., Ковальчук С.М. Особливості функціонально-метаболічної актив- ності мітохондрій мозку при гемічній гіпоксії // Фізіол. журн. – 2006. – 52, № 2. – С. 151.
  16. Реутов В.П., Сорокина Е.Г., Пинелис В.Г. и др. Компенсаторно-приспособительные механизмы при нитритной гипоксии у крыс // Бюл. эксперим. биологии и медицины. – 1993. – № 11. – С. 506–508.
  17. Реутов В.П. Цикл окиси азота в организме мле- копитающих // Успехи биол. химии. – 1995. – 35. – С. 189–228.
  18. Сирота Т.В. Антиоксидантные (антирадикальные) свойства субстратов цикла Кребса. – В кн.: Мате-риалы Всерос. рабочего совещания “Митохондрии в патологии”. – Пущино, 2001. – С.110–112.
  19. 19. Тимирбулатов Р.А., Селезнев Е.И. Метод повыше- ния интенсивности свободнорадикального окисле- ния липидсодержащих компонентов крови и его диагностическое значение // Лаб. дело. – 1981. –№ 4. – С. 209–211.
  20. 20. Тимочко М.Ф., Єлісєєва О.П., Кобилінська Л.І. та ін. Метаболічні аспекти формування кисневого гомео-стазу в екстремальних станах. – Львів, 1998. – 141 с.
  21. Bolanos J.P., Cidad P., Garcia-Nogales P. et al.Regulation of glucose metabolism by nitrosative stress in neural cells // Mol. Aspects Med. – 2004. – 25, № 1–2. – Р. 61–73.
  22. Brookes P.S., Yoon Y., Robotham J.L. et al. Calcium, ATP, and ROS: a mitochondrial love-hate triangle // Amer. J. Physiol. Cell Physiol. – 2004. – 287. –P. C817–C833.
  23. d’Ischia M., Palumbo A., Buzzo F. Interactions of ni- tric oxide with lipid peroxidation products under aerobic conditions: inhibitory effects on the formation of malondialdehyde and related thiobarbituric acid- reactive substances // Nitric Oxide. – 2000. – 4, № 1. –Р. 4–14.
  24. Dobashi K., Pahan K., Chahal A. et al. Modulation of endogenous antioxidant enzymes by nitric oxide in rat C6 glial cells // J.Neurochem. – 1997. – 68, №5. –P. 1896 –1903.
  25. Eto Y., Kang D., Hasegawa E. et al. Succinate-depen- dent lipid peroxidation and its prevention by reduced ubiquinone in beef heart submitochondrial particles // Arch. Biochem.Biophys. – 1992. – 295. – P. 101–106.
  26. Green L.C., Wagner D.A., Glosowski J. et al. Analysis of nitrate, nitrite and [15N]nitrate in biological fluids // Anal. Biochem. – 1982. – 126. – P. 131–138.
  27. Lowry O.H., Rosebrough N.J., Farr A.L. et al. Protein measurement with Folin reagent // J. Biol Chem. – 1951. – 193. – Р. 265–275.
  28. Nomura K., Imai H., Koumura T. et al. Mitochondrial phospholipid hydroperoxide glutathione peroxidase in- hibits the release of cytochrome c from mitochondria by suppressing the peroxidation of cardiolipin in hypoglycaemiainduced apoptosis // Biochem. J. – 2000. –351. – P. 183–193
  29. 29. Puntel R.L., Nogueira C.W., Rocha J.B. Krebs cycle intermediates modulate thiobarbituric acid reactive spe- cies (TBARS) production in rat brain in vitro //Neurochem. Res. – 2005. – 30, № 2. – Р.225–235.
  30. 30. Sarkela T.M., Berthiaume J., Elfering S. et al. The modulation of oxygen radical production by nitric ox- ide in mitochondria // J. Biol. Chem. – 2001. – 276. –P. 6945–6949.
  31. Seilicovich A., Lasaga M., Befumo M. et al. Nitric ox- ide inhibits the release of norepinephrine and dopam- ine from the medial basal hypothalamus of the rat //Proc. Natl. Acad. Sci. USA. – 1995. – 92, № 24. –Р. 11299–11302.
  32. Sims N.R., Nilsson M., Muyderman H. Mitochondrial glutathione: a modulator of brain cell death // J Bioenerg Biomembr. – 2004. – 36, № 4. – Р. 329–333.
  33. Turrens J.F. Mitochondrial formation of reactive oxy- gen species. Topical Review // J.Physiol. – 2003. – 552, № 2. – P. 335–344.
  34. Ursini F., Heim S., Kiess M. et al. Dual function of the selenoprotein PHGPx during sperm maturation // Sci- ence. – 1999. – 285. – P. 1393–1396.

© National Academy of Sciences of Ukraine, Bogomoletz Institute of Physiology, 2014-2024.