Українська English

ISSN 2522-9028 (Print)
ISSN 2522-9036 (Online)
DOI: https://doi.org/10.15407/fz

Fiziologichnyi Zhurnal

is a scientific journal issued by the

Bogomoletz Institute of Physiology
National Academy of Sciences of Ukraine

Editor-in-chief: V.F. Sagach

The journal was founded in 1955 as
1955 – 1977 "Fiziolohichnyi zhurnal" (ISSN 0015 – 3311)
1978 – 1993 "Fiziologicheskii zhurnal" (ISSN 0201 – 8489)
1994 – 2016 "Fiziolohichnyi zhurnal" (ISSN 0201 – 8489)
2017 – "Fiziolohichnyi zhurnal" (ISSN 2522-9028)

Fiziol. Zh. 2003; 49(3): 104-109

Role of krebs cycle intermediates in lipid peroxidation and antioxi-dant enzymes activity under acute hypoxia

N.M.Kurhalyuk, T.V.Serebrovskaya

    Ivan Franko Lviv National University; А.А.BogomoletzInstitute of Physiology Ukrainian Academy of Sciences, Kiev



Abstract

The object of this study was to investigate the effects of exogenous succinate (SC) and α-ketoglutarate (KGL) on intensity of NO metabolism, lipid peroxidation and antioxidant enzymes activity in rat liver tissues under acute hypoxia (AH). Six groups of Wistar male rats participated in the study. Animals of Gr.I underwent i.p. saline injection, Gr.II - saline injection and AH (inhalation of 7% O2, 30 min). Gr. III and IY were examined after i.p. injection of SC (50 mg/kg) or KGL (200 mg/kg) and AH test; Gr.Y -after i.p. injection of SC with α- β-adrenoblockers phentolamine and obzidane (2 mg each) and AH test, Gr. 6 - after i.p. injection of KGL with M- and N-cholinoreceptor blockers athropine (5 mg) and benzohexonium (10 mg) and AH test. It was shown that AH provoked the decrease of NO production by 34%, the addition of SC augmented twice the nitrite anion content, the addition of KGL – in three times. KGL decreased malon dialdehyde content under AH by 32% and SC- by 25%. The least level of lipid peroxidation was registered in Gr.YI. Adrenoblockers did not influence on antioxidant enzymes activity under AH, but cholinoblockers completely eliminated the increase of SOD, catalase, glutathione peroxidase and glutathione reductase activities under KGL treatment. We conclude that nitric oxide production under α-ketoglutarate influence is mediated by cholinoreceptors

Full text: (PDF, in Ukrainian)

References

  1. Гаврилов В.Б., Гаврилова А.П., Мажуль Л.М.Анализ методов определения продуктов перекисного окисления липидов в сыворотке крови по тесту с тиобарбитуровой кислотой // Вопр. мед. химии. – 1987. – 33, № 1. – С. 118 – 122.
  2. Герасимов А.М., Деленян Н.В., Шаов М.Т. Формирование системы противокислородной защиты организма. – М., 1998. – 187 с.
  3. Колб В.Г., Камышников В.С. Справочник по клинической химии. – Минск.: Беларусь, 1982. – С. 219 – 220.
  4. Кондрашова М.Н., Григоренко Е.В., Бабский А.М. Хазанов В.А. Гомеостазирование физиологических функций на уровне митохондрий. – В кн.: Молекулярные механизмы клеточного гомеостаза. – Новосибирск: Наука, 1989. – С. 40 – 66.
  5. Королюк М.А., Иванова Л.И., Майорова И.Г. Метод определения активности каталазы // Лаб. дело. – 1988. – 1. – С. 16 – 19.
  6. Костюк В.А., Потапович А.И., Ковалева Ж.И. Простой и чувствительный метод определения супероксиддисмутазы, основаный на реакции окисления кверцитина // Вопр. мед. химии. – 1990. – 36, № 2 – С. 88 – 91.
  7. Лукьянова Л.Д. Биоэнергетические механизмы формирования гипоксических состояний и подходы к их фармакологической коррекции. – В кн.: Фармакологическая коррекция гипоксических сос тояний. – М., 1989. – С. 11 – 4
  8. Маевский Е.И., Гришина Е.В., Розенфельд А.С. и др. Сукцинат – продукт анаэробных превращений и гипоксический субстрат. – В кн.: Гипоксия, механизмы, адаптация, коррекция: Труды Второй Всерос. конф. – М., 1999. – С. 43 – 44.
  9. 9. Малышев И.Ю., Манухина Е.Б. Стресс, адаптация и оксид азота // Биохимия. – 1998. – 63, № 7. – С. 992 – 1006.
  10. 10. Моин В.М. Простой и специфический метод определения активности глутатионпероксидазы в эритроцитах // Лаб. дело. – 1986. – №12. – С. 724 – 727.
  11. Тимирбулатов Т.А., Селезнев С.И. Метод повышения интенсивности свободнорадикального окисления липидсодержащих компонентов крови и его диагностическое значение // Там же. – 1986. – №4. – С. 209 – 211.
  12. Путилина Ф.Е. Определение активности глутатионредуктазы. – В кн.: Методы биохимических исследований (липидный и энергетический обмен) – Л.: Изд-во Ленингр. ун-та, 1982. – С. 181 – 183.
  13. Cеребровська Т.В., Кургалюк Н.М., Носар В.І.,Колєснікова Є.Е. Вплив інтервальних гіпоксичних подразнень та екзогенного оксиду азоту на процеси енергозабезпечення та ліпопероксидації у печінці щурів за умов гострої гіпоксії // Фізіол. журн. – 2001. – 47, №1. – С. 85 – 92.
  14. Циклические превращения оксида азота в организме млекопитающих. – М.: Наука, 1998. – 159 с.
  15. Brown G. Nitric oxide regulates mitochondrial respiration and cell functions by inhibiting cytochrome oxidase / / FEBS Lett. – 1995. – 369. – P. 136 – 139.
  16. Green L.C., David A.W., Glogowski J. et al. Analysis of nitrate, nitrite and [15N] – nitrate in biological fluids // Anal. Biochem. – 1982. – 126, № 1. – . 131-138.
  17. Gross S., Wolin M. Nitric oxide: pathophysiological mechanism // Annu Rev. Physiol. – 1995. – 57. – P. 737 – 769.
© National Academy of Sciences of Ukraine, Bogomoletz Institute of Physiology, 2014-2024.